在現(xiàn)代分子生物學(xué)與基因工程領(lǐng)域，基因?qū)腚娹D(zhuǎn)化儀是一種至關(guān)重要的工具，它能夠高效地將外源基因?qū)爰?xì)胞內(nèi)，為基因功能研究、基因治療等提供了關(guān)鍵技術(shù)支持。

　　一、前期準(zhǔn)備——構(gòu)建與純化

　　在使用電轉(zhuǎn)化儀之前，首先要構(gòu)建含有目的基因的重組質(zhì)粒。這需要通過PCR技術(shù)擴(kuò)增目的基因，然后將其插入合適的質(zhì)粒載體中，利用限制性內(nèi)切酶和連接酶構(gòu)建重組質(zhì)粒，并轉(zhuǎn)化至大腸桿菌中進(jìn)行大量復(fù)制。接著，需對重組質(zhì)粒進(jìn)行純化，常用的方法有試劑盒法或氯化銫密度梯度離心法，以獲得高純度、高濃度的DNA樣品，其純度通常要求A260/A280比值在1.8-2.0之間，濃度則根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求而定，一般不低于100ng/μL。

　　二、細(xì)胞處理——感受態(tài)細(xì)胞的制備

　　同時，要制備感受態(tài)細(xì)胞。對于細(xì)菌細(xì)胞，如大腸桿菌，常采用氯化鈣法或電擊法。以氯化鈣法為例，需將細(xì)菌培養(yǎng)至對數(shù)生長期，然后用氯化鈣溶液處理，使細(xì)胞處于一種易于吸收外源DNA的生理狀態(tài)，之后通過離心收集細(xì)胞，并將其懸浮于合適的緩沖液中，置于-80°C保存?zhèn)溆谩τ谡婧思?xì)胞，如動物細(xì)胞或植物原生質(zhì)體，細(xì)胞處理的方法則更為復(fù)雜，可能需要使用特定的細(xì)胞松弛素或電穿孔緩沖液來增加細(xì)胞膜的通透性。
 

　　三、電轉(zhuǎn)化操作流程

　　進(jìn)行電轉(zhuǎn)化時，先將處理好的感受態(tài)細(xì)胞與重組質(zhì)粒混合，冰上孵育一段時間，通常為5-15分鐘，使DNA與細(xì)胞充分接觸。然后將混合物轉(zhuǎn)移至預(yù)冷的電轉(zhuǎn)杯中，電轉(zhuǎn)杯的規(guī)格需根據(jù)樣本量選擇。設(shè)置好電轉(zhuǎn)化儀的參數(shù)，包括電壓、電容和電阻等。不同的細(xì)胞類型和實(shí)驗(yàn)?zāi)康模娹D(zhuǎn)參數(shù)差異較大。例如，對于大腸桿菌，電壓可能設(shè)置在1.8-2.5kV，電容25μF，電阻200Ω。最后，將電轉(zhuǎn)杯放入電轉(zhuǎn)化儀中，啟動電脈沖。電脈沖結(jié)束后，迅速向電轉(zhuǎn)杯中加入預(yù)熱的復(fù)蘇培養(yǎng)基，如LB培養(yǎng)基，輕輕混勻后轉(zhuǎn)移到培養(yǎng)皿中，置于恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，使細(xì)胞恢復(fù)生長并表達(dá)外源基因。通過抗生素篩選或其他標(biāo)記篩選出成功轉(zhuǎn)化的細(xì)胞，即可進(jìn)行后續(xù)的基因表達(dá)分析和功能研究。